วัตถุประสงค์, ในหลอดทดลอง การทดสอบความผิดปกติของโครโมโซม (CA) เพื่อระบุสารที่ทำให้เกิดความผิดปกติของโครโมโซมโครงสร้าง (clastogenesis) 2) 3) 4) มันถูกผลิตโดยกลไกต่างๆ การเปลี่ยนแปลงเหล่านี้ส่วนใหญ่จะเป็นอันตรายต่อเซลล์ในช่วงสองสามรอบของเซลล์แรกหลังจากการเหนี่ยวนำ แต่จะใช้เพื่อบ่งบอกถึงการมีอยู่ของการเปลี่ยนแปลงที่ไม่ร้ายแรงเช่นการเปลี่ยนตำแหน่งซึ่งกันและกันการกลับตัวและการลบเล็กน้อย

การเปลี่ยนแปลงที่ลึกซึ้งมากขึ้นเหล่านี้อาจส่งผลกระทบอย่างมีนัยสำคัญทั้งในเซลล์สืบพันธุ์และเซลล์ร่างกาย ดังนั้นการกลายพันธุ์ของโครโมโซมและเหตุการณ์ที่เกี่ยวข้องจึงเป็นสาเหตุของโรคทางพันธุกรรมของมนุษย์หลายชนิดและมีหลักฐานมากมายว่าการเปลี่ยนแปลงเหล่านี้เกี่ยวข้องกับมะเร็งในมนุษย์และระบบการทดลอง การทดสอบอีกวิธีหนึ่งเพื่อทดสอบการเกิด clastogenicity คือ Micronucleus Assay
|
โปรโตคอล |
|
|
เส้นเซลล์ |
เซลล์หนูแฮมสเตอร์จีน V79 หรือ กระตุ้นเซลล์เม็ดเลือดขาวในเลือดของมนุษย์ที่ได้รับการเพาะเลี้ยง |
|
สามจุด |
การกำหนดความสามารถในการเกิด clastogenicity โดยการประเมินด้วยกล้องจุลทรรศน์ของเซลล์ metaphase การกำหนดความมีชีวิตของเซลล์โดยการเพิ่มขึ้นของจำนวนเซลล์ (เซลล์ V79) หรือดัชนี mitotic (เซลล์เม็ดเลือดขาวของมนุษย์) |
|
ความเข้มข้น |
ความเข้มข้นของรายการทดสอบอย่างน้อย 3 รายการประเมินเป็นคู่ ความเข้มข้นสูงสุด: สารเคมี: 2 mg / mL, 2 µL / mL หรือ 10 mM แล้วแต่จำนวนใดจะต่ำที่สุด (5 mg / mL / UVCB สำหรับส่วนประกอบที่ไม่ระบุ) อุปกรณ์ทางการแพทย์: สารสกัด 100% ยา: 0,5 มก. / มล. หรือ 1 มม. แล้วแต่จำนวนใดจะต่ำที่สุด |
|
เวลารับสัมผัสเชื้อ |
การทดลองที่ 4: การฟักตัวระยะสั้น XNUMX ชั่วโมง การทดลองที่ 21: 79 ชั่วโมง (เซลล์ V24) หรือ XNUMX ชั่วโมง (เซลล์เม็ดเลือดขาวของมนุษย์) ใช้เวลาฟักตัวเป็นเวลานาน |
|
การกระตุ้นการเผาผลาญ |
5% ตับหนูทำให้เป็นเนื้อเดียวกัน S9 |
|
การตรวจสอบคุณภาพ |
การควบคุมเชิงลบ: อาหารเลี้ยงเซลล์ การควบคุมเชิงบวก: ethylmethanesulfonate, cyclophosphamide |
|
ทดสอบเครื่องมือเคมี |
อาหารเลี้ยงเซลล์, ไดเมทิลซัลฟอกไซด์ 1%, น้ำเกลือทางสรีรวิทยา 10%, เตตระไฮโดรฟูแรน 0,5%, เอทานอล 0,5% |
|
การจับข้อมูล |
การประเมินความผิดปกติของโครโมโซมด้วยกล้องจุลทรรศน์ในเซลล์เมตาเฟส 300 เซลล์ต่อความเข้มข้น การเพิ่มขึ้นของจำนวนเซลล์ (เซลล์ V79) หรือดัชนีไมโทติกความมีชีวิตของเซลล์ที่กำหนดโดยการประเมินทางสถิติ |
การทดสอบนี้ถือว่ายอมรับได้เมื่อมีการทดลองทั้งสามเงื่อนไข: การรักษาระยะสั้นโดยไม่ต้องกระตุ้นการเผาผลาญและกระตุ้นการเผาผลาญและการรักษาในระยะยาวโดยไม่กระตุ้นการเผาผลาญในกรณีที่ให้ผลลบ
|
การทดลองครั้งแรก (การบ่มเพาะในเวลาสั้น ๆ ) และ การทดลองครั้งที่สอง (การฟักตัวเป็นเวลานาน) |
|
|
วันที่ 1: วันเตรียมการ |
รับเลือดจากผู้บริจาครายเดียวและเพาะเซลล์ การเพาะเลี้ยงลิมโฟไซต์ในเลือดส่วนปลายถูกกระตุ้นให้แยกออกโดยการเติมไมโตเจน (เช่น Phytohemagglutinin: PHA) ลงในอาหารเลี้ยงเชื้อ |
|
วันที่ 3: การบ่มเพาะไอเทมทดสอบ |
การรักษาควรเริ่มประมาณ 48 ชั่วโมงหลังจากการเพาะเลี้ยงเริ่มขึ้นเมื่อเซลล์มีการแพร่กระจายอย่างรวดเร็ว อาหารเลี้ยงเชื้อจะถูกแทนที่ด้วยอาหารเลี้ยงเชื้อที่มีซีรั่ม 9% ที่มีความเข้มข้นของรายการทดสอบที่แตกต่างกันและส่วนผสมของ S25 (โดยการกระตุ้นการเผาผลาญเท่านั้น) ของการรักษา ความเป็นพิษต่อเซลล์และการตกตะกอนจะถูกกำหนดหลังจากระยะเวลาการรักษาของวัฒนธรรม |
|
วันที่ 4: การเตรียมวัฒนธรรม |
ควรสุ่มตัวอย่างเซลล์ก่อนประมาณ 24 ชั่วโมงหลังจากนั้น (1 - 1.5 เท่าของรอบเซลล์ปกติ) |
|
วันที่ 5: ย้อมสีเซลล์ด้วย Giemsa |
หลังจากเตรียมการแล้วเซลล์จะกระจายไปบนสไลด์ สไลด์แห้งด้วยอากาศจะถูกย้อมด้วยสารละลาย Giemsa และวิเคราะห์ด้วยกล้องจุลทรรศน์ |
|
วันที่ 6: เริ่มการวิเคราะห์ Metaphase Cells |
ความผิดปกติของโครโมโซม: ความผิดปกติของโครงสร้างโครโมโซมทั้งหมดเช่นการแตกชิ้นส่วนการลบการเปลี่ยนแปลงและการแตกตัวของโครโมโซมจะถูกบันทึกไว้ ช่องว่างจะถูกบันทึกด้วย แต่จะไม่รวมอยู่ในการคำนวณอัตราการเบี่ยงเบน ดัชนี Mitotic สัมพัทธ์: ความเป็นพิษต่อเซลล์จะได้รับการประเมินโดยดัชนีไมโทซิส (เปอร์เซ็นต์ของเซลล์ในไมโทซิสนับจำนวนเซลล์ไมโทซิสต่อเซลล์ 1000 เซลล์) และค่าต่างๆจะถูกเปรียบเทียบกับการควบคุมเชิงลบ / ตัวทำละลาย ดัชนีสเปรด: วงจรเซลล์ของการเพาะเลี้ยงลิมโฟไซต์ที่แท้จริงได้รับการตรวจสอบโดยใช้เทคนิคการติดฉลาก BrdU |